We investigated vascular access ports for feline blood donation. Eight cats were anesthetized for conventional blood collection by jugular venipuncture at the beginning and end of the study. In-between conventional collections, vascular access ports were used for collection with or without sedation every 6 to 8 wk for 6 mo. Ports remained functional except for one catheter breakage, but intermittent occlusions occurred. Systolic blood pressure was lower during conventional collection. Behavioral abnormalities occurred during 3 port collections. Packed red cells prepared from collected blood were stored at 4°C for 25 d and assessed for quality pre- and post-storage. With both collection methods, pH and glucose level declined, and potassium level, lactate dehydrogenase activity and osmotic fragility increased. There were no differences between methods in pre-storage albumin and HCO(3)(-) levels, and pre and post-storage hematocrit, lactate dehydrogenase activity, and glucose and potassium levels. Pre-storage pH and pCO(2) were higher with conventional collection, and pre- and post-storage osmotic fragility were greater with port collection. One port became infected, but all cultures of packed red cells were negative. Tissue inflammation was evident at port removal. In a second study of conventional collection in 6 cats, use of acepromazine in premedication did not exacerbate hypotension. The use of vascular access ports for feline blood donation is feasible, is associated with less hypotension, and may simplify donation, but red cell quality may decrease, and effects on donors must be considered.
Nous avons étudié les voies d’accès vasculaires pour les dons de sang félins. Huit chats ont été anesthésiés pour collecter du sang de manière conventionnelle par ponction de la veine jugulaire au début et à la fin de l’étude. Entre les collectes conventionnelles, des cathéters à chambre implantables étaient utilisés, avec ou sans sédation, à chaque 6 à 8 semaines pour une durée de 6 mois afin de collecter du sang. Les cathéters sont demeurés fonctionnels sauf pour le bris d’un cathéter, mais des occlusions intermittentes se produisaient. La pression sanguine systolique était plus basse durant la collecte conventionnelle. Des anomalies de comportement se sont produites durant 3 collectes par les cathéters à chambre. Des culots érythrocytaires préparés à partir du sang prélevé ont été entreposés à 4°C pendant 25 jours et évalués pour leur qualité pré-et post-entreposage. Avec les deux méthodes de collecte, le pH et le niveau de glucose ont diminué, alors que le niveau de potassium, l’activité de la lactate déshydrogénase et la fragilité osmotique augmentèrent. Aucune différence n’a été notée en rapport avec la méthode de collecte en ce qui concerne les niveaux d’albumine et de HCO3− pré-entreposage, de même que pour les hématocrites pré-et post-entreposage, l’activité de la lactate déshydrogénase, ainsi que les niveaux de glucose et de potassium. Le pH et la pCO2 étaient plus élevés avec les méthodes conventionnelles de collecte, alors que la fragilité osmotique était plus grande pré-et post-entreposage lors des collectes via les cathéters à chambre. Un des cathéters s’est infecté, mais toutes les cultures des culots érythrocytaires étaient négatives. L’inflammation tissulaire était évidente lors du retrait des cathéters à chambre. Lors d’une seconde étude sur la collecte conventionnelle chez 6 chats, l’utilisation de l’acépromazine en pré-médication n’a pas exacerbé l’hypotension. L’utilisation de cathéters à chambre pour le don sanguin chez les chats est faisable, est associée avec moins d’hypotension, et pourrait simplifier les dons. Par contre, la qualité des globules rouges peut diminuer et les effets sur les donneurs doit être considérés.
(Traduit par Docteur Serge Messier)